ควรเติมอาหารเลี้ยงเชื้อปริมาณเท่าใดลงในขวดทดลองในตู้อบแบบเขย่า?

ข้อมูลจำเพาะที่สำคัญและแนวทางการใช้งาน

1. 1. การเพิ่มประสิทธิภาพปริมาตรการทำงาน​​
   •   •ควรคงปริมาตรของตัวกลางไว้ที่ 20–30% ของความจุทั้งหมดของขวด เพื่อให้แน่ใจว่ามีการถ่ายเทออกซิเจนอย่างเพียงพอและลดแรงเฉือนให้น้อยที่สุด
      
   • •ขีดบอกปริมาตรที่ชัดเจนบนขวดช่วยให้สามารถวัดปริมาตรได้อย่างแม่นยำ
      .
2. 2. พารามิเตอร์การเขย่า​​
   • •ที่แนะนำเครื่องเขย่าฟักไข่ความเร็วในการเขย่า: 75–120 รอบต่อนาที (ปรับได้ตามความต้องการในการทดลอง)
      
   • •สำหรับขวดขนาดใหญ่ (≥3 ลิตร) ให้ลดความเร็วลงเหลือ 90 รอบต่อนาที เพื่อป้องกันการเฉือนของของเหลวมากเกินไปและการเกิดฟอง

---

พารามิเตอร์ที่แนะนำสำหรับเซลล์ CHO และ HEK 293

หมายเหตุ: ข้อมูลนี้ใช้ได้กับเซลล์สายพันธุ์ CHO Stable, CHO Transient และ HEK 293 Transient

---

รายละเอียดทางเทคนิคเพิ่มเติม

1. 1. วัสดุและความปลอดเชื้อ​​
   • • ตัวเลือกวัสดุ PETG/PC:PETG มีความโปร่งใสสูงและทนทานต่อแรงกระแทก ในขณะที่ PC มีเสถียรภาพทางความร้อนที่เหนือกว่า (ทนต่อการนึ่งฆ่าเชื้อที่อุณหภูมิ 121°C)
     •  
   • •การฆ่าเชื้อ: ผ่านการฉายรังแกแกมมา บรรจุแยกชิ้น ผ่านการรับรองว่าปราศจาก DNase/RNase ปราศจากเอนโดท็อกซิน และเป็นไปตามมาตรฐาน USP Class VI
      
2. 2. ข้อดีด้านการออกแบบ​​
   • • ฝาปิดออกแบบตามหลักสรีรศาสตร์: ช่วยให้จับถนัดมือและใช้งานร่วมกับปิเปต/เครื่องขูดเซลล์ได้
      
   • •มีรุ่นที่มีแผ่นกั้นให้เลือก: ช่วยเพิ่มประสิทธิภาพการผสมสำหรับการเพาะเลี้ยงที่มีความหนาแน่นสูงโดยการเพิ่มการถ่ายเทออกซิเจน (kLa)
      
3. 3. หมายเหตุสำคัญเกี่ยวกับการใช้งาน​​
   • •หลีกเลี่ยงการเติมมากเกินไป: ปริมาตรที่มากกว่า 30% อาจลดการแลกเปลี่ยนก๊าซ ทำให้เกิดภาวะขาดออกซิเจนในวัฒนธรรมแบบใช้ออกซิเจน
      
   • •ตรวจสอบค่า pH/ออกซิเจน: รักษาค่า pH ให้อยู่ที่ 7.0–7.4 (เซลล์ CHO) และออกซิเจนละลาย (DO) >40% เพื่อการเผาผลาญที่เหมาะสม
      
   • •ความไวต่อแรงเฉือน: สำหรับเซลล์ที่ไวต่อแรงเฉือน (เช่น เซลล์ T ปฐมภูมิ) ให้ใช้ความเร็วรอบต่ำ (80–100 รอบต่อนาที) หรือใช้สารป้องกันการเกิดฟอง

---

การประยุกต์ใช้ที่นอกเหนือจากการเพาะปลูกแบบมาตรฐาน

• •ระบบเพอร์ฟิวชั่น: ผสานรวมเข้ากับท่อส่งสารอาหารเพื่อการจ่ายสารอาหารอย่างต่อเนื่อง ทำให้ได้ความหนาแน่นของเซลล์มากกว่า 20 × 10⁶ เซลล์/มล.
   
• •จุลินทรีย์เพาะเลี้ยง: เหมาะสำหรับการหมักแบคทีเรีย/ยีสต์ โดยมีแผ่นกั้นเพื่อการเติมอากาศที่ดีขึ้น
   
• •โปรโตคอลการขยายขนาด: เมื่อเปลี่ยนจากขวดทดลองไปเป็นเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพ ให้รักษาอัตราการถ่ายเทออกซิเจนเชิงปริมาตร (kLa) ให้คงที่โดยการปรับการกวนและการเติมอากาศ